原理介紹
自從1924年Feulgen等人建立了DNA-Feulgen染色方法以來,至今這種方法仍是DNA定量測定的主要染色方法之一.Feulgen染色是經典顯示脫氧核糖核酸的方法,該法要求用Carnay氏液固定的新鮮組織效果最好,酒精-甲醛液次之,單純甲醛固定欠佳,效果不滿意.
自Feulgen等發明該顯示DNA的Feulgen反應法以來，其作用機制也久經研究和討論，現已取得一致意見。其具體反應原理是，標本經稀鹽酸水解後，DNA分子中的嘌呤鹼基被解離，從而在核糖的一端出現了醛基。Schiff試劑中的無色品紅可與醛基反應，形成含有醌基的化合物分子, 因醌基為發色團，故可呈現出紫紅色。也就是說, DNA經稀酸水解後產生的醛基，具有還原作用，可與無色品紅結合形成紫紅色化合物，從而顯示出DNA的分布。
2HCl+Na2S2O5→2NaCl+SO2+H2SO3
DNA是主要的遺傳物質，集中於染色體上。1924年孚爾根首先用席夫試劑(Schiff)作試驗，鑑定了染色體上DNA的存在，故稱為孚爾根染色法。孚爾根染色法的反應原理主要與席夫試劑的化學性質有關，此試劑的基本成分是鹼性品紅，偏亞硫酸氫鈉(NaHSO3)和鹽酸.鹼性品紅的主要成分是三氨基三苯甲烷氯化物。
鹼性品紅原為桃紅色，當與亞硫酸作用時被氧化，使醌型變為苯型，由桃紅色變為無色透明的N-亞磺酸亞硫酸副品紅鹼，當它與醛基作用時，其分子式又恢復為醌型結構，呈現紫紅色
利用1M HCl 、60℃下水解時，可將DNA分子中嘌呤鹼基與去氧核糖之間的糖苷鍵打斷，使嘌呤脫下，並使去氧核糖C-1位置釋放醛基與席夫試劑反應顯紫紅色。細胞中只有DNA才具有這種專一的孚爾根反應，因此利用孚爾根反應，可以鑑定DNA的存在。並廣泛套用於核及染色體的研究中。
Feulgen方法應注意的問題
對照切片的製做
進行Feulgen反應時, 一般要做一對照切片以便驗證反應結果。對照切片應不經水解直接放在schiff劑內，且應為負反應。但需要注意的是，對照切片在schiff試劑中最多不要超過1 h (0.5 h即可)，時間過長，試劑本身的酸性也會使DNA水解，從而出現假的正反應。
固定劑的選擇
以前很多人認為，選用的固定劑不應含有醛基或含有氧化劑。後來發現含醛基或氧化劑的固定劑對反應的專一性並沒有影響。實踐證明，一切好的組織學固定劑均適用於Feulgen反應。如Bhampy固定劑、Helly固定劑、Flemming固定劑、OsO4固定劑、Carnoy固定劑、zenker固定劑和Bouin-Aller固定劑。
但在上述固定劑中，以OsO4和Carnoy效果較好，OsO4(1%或0.5%)是Feulgen反應的理想固定劑，只是因OsO4價錢較貴，故一般多採用Carnoy固定液。在Feulgen反應中，不能單獨使用Bouin定液，因為它是Feulgen反應的最壞固定劑，但經Aller改進後的Bouin-Aller固定液效果卻較好。
水解時間
Feulgen反應通常用稀酸進行水解，但水解的時間一定要適當。如水解時間不夠, 反應就會變弱；如水解時間過長或水解地過於劇烈，則脫氧核糖也易掉下來，反應也會減弱。適當的水解時間一般為8~12min。但是水解時間長短也要視標本的類型(如厚薄等)、固定劑的性質以及酸的濃度而定。
Schiff試劑的作用
Feulgen反應成功與否的一個非常關鍵的因素，就是schiff試劑的質量。有一大類試劑均稱為鹼性品紅，它們實際上是由幾種產品分別組成的。因此只能選用註明“DNA染色反套用”的鹼性品紅才行。此外，Schiff試劑的配製方法也可影響DNA的染色反應。
