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豬圓環病毒感染的病畜易感動物
豬是豬圓環病毒（PVC）的主要宿主。豬對PVC有較強的易感性，各種年齡的豬均可感染，但仔豬感染後發病嚴重。胚胎期或生後早期感染的豬，往往在斷奶後才可以發病，一般集中在5—18周齡，尤其在6—12周齡最為多見。懷孕母豬感染PVC後，可經胎盤垂直傳染給仔豬，並導致繁殖障礙。感染豬可自鼻液、糞便等廢物中排除病毒，經消化道、呼吸道引起感染。血清學特徵
血清學調查發現，國外豬群PVC陽性率達20%—80%，國內的陽性率也達52.8%—100%。自PVC發現以來，PVC-1和PVC-2已經被證實為世界性流行和存在的病毒。其中，PVC-2病毒在我國豬群中的感染已經相當嚴重。
病毒是致病的必要因素，但不是充分條件，必須在其他因素的共同參與下才能導致明顯的和嚴重的臨診病症，這些因素除了一些常見的、重要的病原體外，還包括飼養管理不善、通風不良、溫度不適、免疫接種應激、不同來源和日齡的豬混養等。本病的發病率和死亡率變化很大，依據豬群健康狀況、飼養管理水平、環境條件及病毒類型等而定，一般在10%—20%，個別發病、死亡率可達40%。
豬病症狀
豬圓環病毒感染後潛伏期均較長，即使胚胎期或出生後早期感染，也多在斷奶以後才陸續出現症狀。PVC-2感染可以引起以下多種病症：豬斷奶後多系統衰竭綜合症
通常發生於斷奶仔豬，1997年首次報導，隨後美洲、歐洲和亞洲各國相繼報導了該病。現已證實PVC-2是豬斷奶後多系統衰竭綜合症的重要病原，繁殖與呼吸綜合症病毒、細小病毒、偽狂犬病病毒等病原混合感染和免疫刺激可以加重該病的危害程度。患豬表現為精神欠佳、食欲不振、體溫略偏高、肌肉衰弱無力、下痢、呼吸困難、眼瞼水腫、黃疸、貧血、消瘦、生長發育不良，與同齡豬體重相差甚大，皮膚濕疹，全身性的淋巴結病變，尤其以腹股溝、腸系膜、支氣管以及縱膈淋巴結腫脹明顯，發病率為5%—30%，死亡率為5%—40%不等，康復豬成為僵豬。
皮炎和腎病綜合症
通常發生於8—18周齡的豬。在1993年首次報導於英國，隨後在美國、歐洲和南非、亞洲均有報導。發病率為0.15%—2%，有的時候可高達7%。以會陰部和四肢皮膚出現紅紫色隆起的不規則斑塊為主要症狀。患豬表現為皮下水腫，食慾喪失，有時體溫上升。通常在3d內死亡，有時可以維持2—3周。增生性壞死性間質性肺炎
此病主要危害6—14周齡的豬。發病率為2%—30%，死亡率為4%—10%。繁殖障礙
導致母豬返情率增加、產木乃伊胎、流產以及死胎和產弱仔等。
豬病防治
因為目前國際上還沒有有效疫苗由於PVC-2感染的免疫預防，因此控制PVC-2感染的主要措施包括：加強環境消毒和飼養管理，減少仔豬應激，做好偽狂犬、豬繁殖與呼吸系統綜合症、細小病毒病、氣喘病、傳染性胸膜肺炎等其他疫病的綜合防治等。必要時可試用自家滅活苗預防。定期在飼料中添加抗生素類藥物如支原淨、金黴素、阿莫西林等，對預防本病或降低發病率有一定作用，這主要是因為抑制了豬群中的一些常見細菌性病原體，增強了豬群抵抗力。對發病豬群最好淘汰，不能淘汰者使用上述藥物同時配合對症治療，可降低死亡率。
診斷方式
豬圓環病毒(Porcinecircovirus，PCV)屬於圓環病毒科、圓環病毒屬，為單股負鏈環狀DNA病毒。該病毒粒子直徑為14nm～25nm，為二十面體對稱結構，無囊膜，是獸醫學上已知動物病毒中最小的病毒之一。根據PCV的致病性、抗原性及核苷酸序列，將其分為PCV-1和PCV-2兩型。有關PCV引起疾病的最早報導發生在1991年的加拿大，是由PCV-2引起的斷奶仔豬多系統衰竭綜合徵(Post-weaningmultisystemicwastingsyndrome，PMWS)。至1994年PMWS已呈廣泛性流行，法國、美國、西班牙、北愛爾蘭及日本相繼報導了該病的發生，此後韓國、義大利、德國、丹麥、荷蘭、墨西哥等國家也證實了該病的存在。我國雖然自2000年才有對圓環病毒感染豬的報導並引起重視，但對於豬血清中豬圓環病毒2型(PCV-2)抗體所作的回顧性檢測以及對豬的組織樣本所作的回顧性檢測結果表明，PCV-2抗體至少從1969年起就已經存在於豬群中了。臨床上豬感染PCV-1很常見，普遍認為廣泛存在於豬體內及豬源傳代細胞系，由於其無致病性，所以無法通過臨床症狀或病理診斷來確定是否感染PCV-1。但PCV-2與豬群中發生的多種疾病相關，有其相應的臨床症狀和病理表現，在臨床上主要引起PMWS、豬皮炎腎病綜合徵(Porcinedermatitisandnephropathysyndrome，PDNS)、豬呼吸道疾病複合征(Porcinerespiratorydiseasecomplex，PRDC)及A2型先天性震顫(Congenitaltremor，CT)。PCV-2與豬細小病毒(Porcineparvovirus，PPV)、豬流感病毒(Swineinfluenzavirus，SIV)、豬繁殖與呼吸綜合徵病毒(Porcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus，PRRSV)等病原可以混合感染，致病性增強。本文綜述了豬圓環病毒診斷學方法的研究進展，以供借鑑。豬圓環病毒分為1型和2型。目前還沒有證據表明豬圓環病毒1型可以導致豬發病，但其在PK-15細胞中的廣泛污染和在豬群中的高感染率已經引起了人們的高度關注，而豬圓環病毒2型的危害在於能夠使感染豬只的免疫功能受到損害，這種可導致機體免疫抑制的病毒，由於經常以亞臨床感染的形式出現，常易被忽視。為了更好地控制豬圓環病毒的感染，迫切需要尋找一種適合的快速準確的診斷方法。但目前在臨床診斷和實驗室的診斷過程中，單一的診斷方法往往受到多種因素的影響，這就需要根據目前各種檢測豬圓環病毒的方法及其優缺點進行分析，套用多種方法相結合，最佳化檢測手段，為尋找一種適合的快速準確的診斷方法、制定合理的免疫程式和發展新型的診斷方法提供參考。
豬圓環病毒感染的臨床診斷
豬感染PCV-2後主要表現為漸進性消瘦，生長遲緩，採食量下降，被毛粗亂，精神差，相當一部分豬只出現呼吸困難呈腹式呼吸，少數豬只有拉稀症狀，有的豬出現貧血，個別豬出現黃疸症狀；PCV-2感染豬引起的CT，震顫為雙側，影響骨骼肌肉，當臥下或睡覺時震顫消失，外界刺激可引發或加重震顫，有的在整個生長和發育期間都不斷發生震顫；PCV-2感染豬引起PDNS的臨床症狀常見為皮膚發生圓型或不規則的隆起，呈現紅色或紫色中央為黑色病灶。豬圓環病毒感染的病理學診斷
豬感染PCV-2後，最顯著的剖檢病變是全身淋巴結，特別是腹股溝淋巴結、縱隔淋巴結、肺門淋巴結、腸系膜淋巴結及下頜淋巴結腫大2倍～5倍，有時可達10倍；肺臟腫脹、堅硬或似橡皮，部分病例形成固化、緻密的病灶。嚴重病例肺泡出血，肺呈紫褐色，有的肺尖葉和心葉萎縮或實質性病變；半數病例為輕度到中度的肝萎縮，花斑肝。肝小葉間結締組織增生明顯；脾臟常腫大，呈肉樣變化；腎為花斑腎，水腫，呈灰白色，被膜下有時有白色壞死灶；胃的食管部黏膜水腫和非出血性潰瘍；迴腸和結腸段腸壁變薄，盲腸和結腸黏膜充血和出血。另外，經常見到由繼發感染引起的胸膜炎、腹膜炎、心包炎(心包膜內有大量炎性滲出物)和關節炎。當發現豬全身淋巴結腫大，肺退化不全或形成固化、緻密病灶時，應懷疑為PCV-2感染。如病理組織學檢查可見全身淋巴組織的淋巴細胞減少，單核巨噬細胞浸潤及形成多核巨細胞，並在這些細胞中觀察到嗜鹼性或兩性染色的細胞質內包涵體，則基本可以確診。豬圓環病毒感染的實驗室診斷
電鏡法利用電鏡技術可以直觀、準確的鑑別病毒，根據病毒本身所具有的形態、結構和大小等不同特徵，可即刻做出診斷。Stevenson首次在透射電鏡下對被PCV-2持續感染的PK-15細胞內的PCV-2進行超微結構的觀察，並詳細描述了在細胞的細胞漿與細胞核內的病毒包涵體及病毒粒子的形態。郎洪武從發病豬的脾臟和淋巴結組織的超薄切片中觀察到了大量直徑17nm、圓形、無囊膜的PCV病毒粒子。
免疫組織化學檢測技術
Sorden等採用純化的PCV-2抗原免疫兔子，得到兔抗PCV-2高免血清。利用此高免血清結合福馬林固定石蠟包埋組織中的PCV-2抗原，再採用生物素標記的抗兔二抗與兔血清結合，最後用過氧化物酶標記的鏈黴素染色。他們套用此法發現陽性細胞記憶體在大量濃染的圓形結構，大小和形狀與包涵體相似。Chianini等也用兔抗PCV-2的陽性血清建立了免疫組織化學(immunohistochemistry)檢測技術。Magar等為了克服內源性過氧化物酶對檢測結果的影響，將過氧化物酶標記的第二抗體改用免疫膠體銀標記，取得了更好的檢測效果。
免疫螢光技術
免疫螢光技術(immunofluorescenceassay，IFA)可用於PCV的抗體檢測及抗原組織定位的研究。Allan利用接免疫螢光來檢測PCV，就是將組織病料以蓋玻片在PK-15細胞中培養，丙酮固定，用兔抗PCV高免血清與細胞培養物中的PCV反應，可對PCV進行檢測和分型。崔尚金等[1]將接種PCV-2且經多次傳代的PK-15細胞分散到96孔細胞培養板上，製成抗原診斷板，檢測血清中PCV-2的抗體。現在一般認為IFA是實驗室檢測PCV-2的一種快速、靈敏、成本低的方法，但操作上較複雜，不宜作為臨床快速診斷。
酶聯免疫吸附試驗診斷方法
酶聯免疫吸附試驗(Enzyme-linkedimmunosorbentassay，ELISA)可以檢測抗體，也可以檢測抗原，具有靈敏、簡單、快捷的特點。採用Walker等的競爭ELISA來檢測PCV-2抗體，此法的檢出率為99.58%。Allan等也利用單抗建立了抗原捕獲ELISA來檢測PCV-2特異性抗體。琚春梅等[2]利用PCV-2-ORF2基因原核表達產物建立了ELISA檢測方法。崔尚金等[3]以重組桿狀病毒表達PCV衣殼蛋白作為ELISA抗原，提高了HRP標記的二抗的稀釋倍數，降低了背景的非特異性。林彥星等[4]套用原核表達的PCV-2Cap蛋白建立了間接ELISA。張曉勇等[5]利用巴斯德畢赤酵母高效表達PCV-2-ORF2基因編碼蛋白建立了。
預防
1.平時只能依靠生物安全措施，檢疫、隔離，防止其它動物(鼠和野鳥等)接近豬場，全進全出。2.發病豬場控制措施：降低飼養密度；實行全進全出的飼養制度；禁止不同來源及不同年齡段豬混養；減少環境應激因素的發生，控制並發感染。
