概況
PAS染色法（ Periodic Acid- Schiff stain）在組織學上，主要用來檢測組織中的糖類。過碘酸把糖類相鄰兩個碳上的羥基氧化成醛基，再用Schiff試劑和醛基反應使呈現紫紅色。
原理
PAS染色又稱糖原染色。一般用來顯示糖元和其它多糖物質。
原理：過碘酸能使細胞內的多糖乙二醇基氧化成乙二醛，再與 Schiff氏液的無色品紅結合，紅色，定位於胞漿上。
套用
隨著醫學實驗技術的發展，糖原染色套用的範圍更加廣泛，如用以證明與鑑別細胞內空泡狀的性質 ，心肌病變及其他心血管疾病的診斷 ，糖原累積病診斷和研究 ，糖尿病的診斷和研究 ，用於某些腫瘤的診斷等。除用於糖原的鑑定和黏液的顯示外 ，還可以觀察腎小球基底膜 、結腸杯狀細胞 中性黏液物質 、阿米巴滋養體和黴菌的著色。臨床診斷、分類和治療提供 了重要的依據。
方法
固定液
Carnoy固定液： 純酒精 60 ml 冰醋酸 10ml氯仿 30ml,也可以選用75%酒精.
液配製
1) 過碘酸酒清夜配法:
過碘酸 (HIO .2H O) 0.4g 95%酒精 35ml M/5醋酸鈉 (2.72g+蒸餾水100ml) 5ml蒸餾水 10ml
保存於冰櫃內,用棕色瓶,可用兩周.
2) Schiff氏液:
0.5克鹼性品紅加入100毫升蒸餾水中,時時搖動三角瓶5分鐘,使之充分溶解.冷卻至50℃後過濾加入10毫升1N鹽酸.冷卻至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸鈉,在室溫中至少靜置24小時,然後密封冰櫃保存.
3) Schiff氏酒精液配置 Schiff氏液 11.5ml 1N HCI 0.5ml 純酒精 23ml
4) 亞硫酸水 1%偏重亞硫酸鈉10ml 1N HCI 10ml 蒸餾水 180ml的樹膠溶解。
5）哈瑞或邁耶蘇木精 略
染色步驟
1. 石蠟切片脫蠟至水（細胞塗片，冰凍切片直接水洗）
2. 蒸餾水洗
3. 過碘酸酒清夜10min
4. 自來水沖洗10min
5. Schiff氏液10min
6. 流水沖洗5min
7.用哈瑞蘇木精或邁耶蘇木精染核3min(細胞核染色過深可用鹽酸酒精分化）
8. 流水沖洗5min
9. 常規脫水、透明、封固
結果
PAS陽性為紅色，細胞核藍色。
實驗效果
準備
1、10g/L過碘酸液
2、Schiff染液：
鹼性品紅0.5g
DH2O 100ml
煮沸後，待片刻，加入鹼性品紅，振盪數分鐘使品紅溶解，冷至50℃加入1M的鹽酸20ml，混勻。待冷
卻至25℃加入偏重亞硫酸鈉0.5g，混合，置於帶塞的棕色瓶中，放於暗處24小時，染液為無色，如為微紅則
加活性炭1－2g，混合過濾，如過濾液仍有紅色，應再加少許活性炭，時紅色完全被吸收為止。製成後置於棕色
瓶內保存在冰櫃備用，如變為紅色，則不能使用。
4、蘇木素液：
蘇木素0.9g
95%乙醇 10ml
銨（鉀）明礬 20g
DH2O 200ml
將蘇木素溶於95%的乙醇，鉀明礬溶於水（可加熱），然後將蘇木素液加入明礬液中混合，用強火煮
沸後加氧化汞0.5g，迅速攪拌，成深紫色，迅速移入冷水中，次日過濾，臨用時取此液95ml加冰醋酸
5ml，可使細胞著色清楚。
方法
1、將新鮮血片或骨髓片用95%乙醇固定10分鐘。
2、10g/L過碘酸液作用20分鐘
3、DH2O洗滌幾次，晾乾
4、Schiff染液，60分鐘
5、用自來水洗滌15分鐘（細水長流沖洗）
6、蘇木素染液10分鐘。
7、自來水沖洗15分鐘，待乾。
結果
陽性反應，胞漿呈紅色，陰性反應，胞漿呈無色；
在正常血片中RBC不染色；
PLT染成深紅色；
中性粒細胞胞漿染成紅色或深紅色，有些細胞有陽性顆粒；
單核細胞的胞漿染成淡紅色，可含有細小或粗大陽性顆粒；
少數淋巴細胞的胞漿內含有少許小的淡紅色或紅色顆粒；
正常骨髓的幼稚細胞和有核RBC都不染色；
巨核細胞的胞漿內呈彌散紅色或深紅色。
巨核細胞的胞漿內呈彌散紅色或深紅色。
