常用指標
在測定某種毒物的半致死濃度(semilethalconcentration，LC50)時，經常用到四個指標，分別是24小時半數致死濃度24hLC50；48小時半數致死濃度48hLC50；72小時半數致死濃度72hLC50；96小時半數致死濃度96hLC50。例子
乙醇對年輕和年老大鼠的口服LD50分別為10.6g/kg和7.06g/kg。菸鹼（尼古丁）對大鼠的口服LD50為50mg/kg。
套用慣例
LD50的表達方式通常為有毒物質的質量和試驗生物體重之比，例如"毫克/千克體重"。雖然毒性不一定和體重成正比，但這種表達方式仍有助比較不同物質的相對毒性，以及估計同一物質在不同大小動物之間的毒性劑量。套用半數致死這量度方法有助減少量度極端情況所帶來的問題，以及減少所需試驗次數；然而這亦代表LD50並對所有試驗生物的致死量：有些可能死於遠低於LD50的劑量，有些卻能在遠高於LD50的劑量下生存。在特殊需要下，研究人員亦可能會量度LD1或LD99等指標（即殺死1%或99%試驗總體之劑量）。
半數致死量物質的毒性往往受給予方式影響。一般而言，口服毒性會低於靜脈注射的毒性。故此在表達LD50時經常會附帶給予方式，例如“LD50i.v.”表示靜脈注射下的LD50。
和LD50相關的兩種指標，LD50/30和LD50/60，是分別指在沒有治療的情況下，導致受試總體在30天或60天後半數死亡的劑量。這些指標通常用於描述輻射毒性。
其它指標
另一種毒性指標，LCt50，包含了濃度(C)和暴露時間(t)的描述，通常以"毫克·分鐘/立方米"作描述，類似的ICt50則是使半數人員失能的劑量。這兩種指標通常作描述化學武器，其毒性亦受呼吸速度和衣著影響。Ct這概念最先由弗里茨·哈伯提出，假設在100mg/m3下暴露1分鐘和10mg/m3下暴露10分鐘是相等的。然而這定律對於一些可以被身體快速分解的物質如氰化氫便不適用；在這種情況下，需要一定的暴露時間才可確定致死量。在環境研究中，LCt亦可用於描述水中的有毒物質。對於病原體，亦有一種類似的半數感染量（ID50）的概念，是指在某一給予途徑下足以令半數受試群體感染的病原體數量，例如口服1200個病原體/人。因為病原體數量難以量度，感染量亦會以對不同動物的LD50表達。對於生物武器的感染量，亦可以ICt50表達。
爭議
動物權利組織一直批評以動物進行LD50測試，特別是一些物質可能令動物在長時間痛苦下死去。一些國家如英國已開始禁止口服LD50測試，而經濟合作與發展組織（OECD）亦在2001年廢除對口服毒性測試的要求。測定方法
Reed-Muench法生物受到病毒感染後，體內產生特異性中和抗體，並與相應的病毒粒子呈現特異性結合，因而阻止病毒對敏感細胞的吸附，或抑制其侵入，使病毒失去感染能力。中和試驗(NeutralizationTest)是以測定病毒的感染力為基礎，以比較病毒受免疫血清中和後的殘存感染力為依據，來判定免疫血清中和病毒的能力。
中和試驗常用的有兩種方法：一種是固定病毒量與等量系列倍比稀釋的血清混合，另一種是固定血清用量與等量系列對數稀釋(即十倍遞次稀釋)的病毒混合；然後把血清——病毒混合物置適當的條件下感作一定時間後，接種于敏感細胞、雞胚或動物，測定血清阻止病毒感染宿主的能力及其效價。如果接種血清病毒混合物的宿主與對照(指僅接種病毒的宿主)一樣地出現病變或死亡，說明血清中沒有相應的中和抗體。中和反應不僅能定性而且能定量，故中和試驗可套用於：
病毒株的種型鑑定：中和試驗具有較高的特異性，利用同一病毒的不同型的毒株或不同型標準血清，即可測知相應血清或病毒的型，所以，中和試驗不但可以定屬而且可以定型。
測定血清抗體效價：中和抗體出現於病毒感染的較早期，在體內的維持時間較長。動物體內中和抗體水平的高低，可顯示動物抵抗病毒的能力。
分析病毒的抗原性。
毒素和抗毒素亦可進行中和試驗，其方法與病毒中和試驗基本相同。
用組織細胞進行中和試驗，有常量法和微量法兩種，因微量法簡便，結果易於判定，適於作大批量試驗，所以得到了廣泛的套用。
固定血清
——稀釋病毒法(病毒中和試驗)病毒毒價的測定 毒價單位：衡量病毒毒價(毒力)的單位過去多用最小致死量(MLD)，即經規定的途徑，以不同的劑量接種試驗動物，在一定時間內能致全組試驗動物死亡的最小劑量。但由於劑量的遞增與死亡率遞增不呈線性關係，在越接近100%死亡時，對劑量的遞增越不敏感。而一般在死亡率越接近50%時，對劑量的變化越敏感，故現多改用半數致死量(LD50)作為毒價測定單位，即經規定的途徑，以不同的劑量接種試驗動物，在一定時間內能致半數試驗動物死亡的劑量。用雞胚測定時，毒價單位為雞胚半數致死量(ELD50)或雞胚半數感染量(EID50)。用細胞培養測定時，用組織細胞半數感染量(TCID50)。在測定疫苗的免疫性能時，則用半數免疫量(IMD50)或半數保護量(PD50)。
固定病毒
稀釋血清法（血清中和試驗）病毒毒價的測定（微量法）
(1)病毒的製備 將病毒接種於單層細胞，37℃吸附1h後加入維持液，置溫箱培養；逐日觀察，待細胞病變（CPE）達75%以上，收穫病毒懸液凍融或超音波處理，以3000r/min離心10min，取上清液，定量分裝成1ml小瓶置-70℃保存備用，選用的病毒必須是對細胞有較穩定的致病力。
(2)病毒毒價測定 取置-70℃冰櫃保存的病毒一瓶，將病毒在96孔培養板上作10倍遞進稀釋即10，10，10……，每孔病毒懸液量為50μl，每個稀釋度作8孔，每孔加入100細胞懸液，每塊板的最後一行設8孔細胞對照，製備細胞懸液的濃度以使細胞在24h內長滿單層為度。把培養板置5%CO2溫箱37℃培養，從48-14h逐日觀察細胞病變，記錄結果。
