免疫染色實驗方法和步驟
1.樣品準備(Sample preparation)
對於貼壁細胞：Ø 可以直接用多孔板，例如6孔板、24孔板等，培養細胞，然後到預定時間時進行固定等後續操作。 Ø 也可以用潔淨的蓋玻片，70%乙醇中浸泡後，用無菌的鑷子放置到6孔板內，然後用無菌的生理鹽水、PBS或培養液洗去殘留的乙
醇。這時就可以種入細胞進行培養，待細胞貼在蓋玻片上生長良好後，即可進行固定等後續操作。
對於懸浮細胞：
Ø 把細胞先在固定液中固定，然後把細胞滴加在載玻片上，乾燥後細胞會緊貼在載玻片上。然後就可以進行後續操作。如果細胞的 粘附能力不佳，可以在載玻片上用PDL等物質進行處理，以增強載玻片的粘附能力。
對於冷凍切片：
Ø
切片放置在載玻片上後，可以直接進行固定等後續操作。
對於石蠟切片：
Ø 脫蠟：切片在二甲苯中脫蠟5分鐘，再換用新鮮的二甲苯脫蠟，共用二甲苯脫蠟3次。無水乙醇5分鐘，兩次。90%乙醇5分鐘，兩
次，70%乙醇5分鐘，一次。蒸餾水5分鐘，兩次。
Ø 抗原修復：根據不同的抗原和抗體，可以選擇把切片放置在如下抗原修復液中，10mM檸檬酸鈉，pH6.0，或1mM EDTA，pH8.0，
或10mM Tris, pH10.0，95℃加熱12分鐘，大約在30分鐘內緩慢冷卻至室溫。
2.固定
Ø 可以使用適當的固定液固定細胞或切片，例如碧雲天生產的免疫染色固定液。固定完畢後，可以用免疫染色洗滌液洗滌兩次，每 次5分鐘。3.封閉(Blocking)
Ø加入免疫染色封閉液，封閉60分鐘。如果背景較高，可以4℃封閉過夜。
Ø
從封閉開始所有的步驟，一定要注意樣品的保濕，避免樣品的乾燥，否則極易產生較高的背景。
Ø 在整個免疫染色過程中我們推薦使用碧雲天的側擺搖床，側向擺動速度比較緩慢，而且也容易讓溶液覆蓋樣品。如果樣品比較容 易脫落，也可以把所有的步驟放置在桌面上靜止進行，即封閉、抗體孵育、洗滌等步驟均不需搖動，但靜止操作時宜適當延長作
用時間或次數。
4.一抗孵育(Primary antibody incubation)
Ø參考一抗的說明書，按照適當比例用免疫染色一抗稀釋液稀釋一抗。
Ø 用微型台式真空泵吸盡封閉液，立即加入稀釋好的一抗，室溫或4℃在側擺搖床上緩慢搖動孵育一小時。如果一抗孵育一小時效
果不佳，可以4℃緩慢搖動孵育過夜。
Ø 回收一抗。加入免疫染色洗滌液， 在側擺搖床上緩慢搖動洗滌5分鐘。吸盡洗滌液後，再加入洗滌液，洗滌5分鐘。共洗滌3次。
如果結果背景較高可以適當延長洗滌時間並增加洗滌次數。
5.二抗孵育(Secondary antibody inucubation)
Ø 參考二抗的說明書，按照適當比例用免疫螢光染色二抗稀釋液稀釋螢光標記的二抗，或者用免疫染色(非螢光)二抗稀釋液稀釋辣 根過氧化物酶(HRP)或生物素(Biotin)或鹼性磷酸酯酶(AP)標記的二抗。 Ø
用微型台式真空泵吸盡洗滌液，立即加入稀釋好的二抗，室溫或4℃在側擺搖床上緩慢搖動孵育一小時。
Ø 回收二抗。加入免疫染色洗滌液， 在側擺搖床上緩慢搖動洗滌5分鐘。吸盡洗滌液後，再加入洗滌液，洗滌5分鐘。共洗滌3次。
如果結果背景較高，可以適當延長洗滌時間並增加洗滌次數。
6.蛋白檢測(Detection of proteins)
Ø對於免疫螢光染色，此時已經可以直接到螢光顯微鏡下觀察。
Ø
對於非免疫螢光染色可以選用DAB等適當的顯色底物，或AB檢測體系等進行後續檢測。
7.多重染色(Multiple staining)
Ø 如果進行的是免疫螢光染色，通常都可以進行多重染色。對於可以產生有色沉澱物的染色反應，例如DAB染色，一般不適合再進行多重染色。
Ø 多重螢光染色： 可以使用紅色螢光、綠色螢光和藍色螢光進行三重螢光染色。例如用免疫螢光染色試劑盒-抗小鼠Cy3進行紅色螢光染色，隨後可 以用免疫螢光染色試劑盒-抗兔Cy2進行綠色螢光染色，在完成上述兩種染色後可以使用Hoechst染色試劑盒對細胞核進行染色，
染色後為藍色螢光。
Ø 用HE染色進行復染：
免疫螢光染色後可以用蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒進行HE染色。
