電泳簡介
聚丙醯胺凝膠電泳
中性聚丙烯醯胺凝膠電泳
安裝電泳裝置和配製凝膠溶液
操作步驟
1.必要時可用KOH/甲醇清洗玻璃板和間隔片。
2.用溫熱的去污劑溶液洗滌玻璃板和間隔片，再充分漂洗，先用自來水，再用去離子水。應拿取玻璃的邊緣部分或帶手套操作，以免手上的油脂殘留在玻璃板的工作面上。用乙醇沖洗玻璃板，並將其置於一邊晾乾。
3.（可做可不做）其中一塊玻璃板的一面用矽化液處理（如Sigmacote或Acrylease）：在化學通風廚內，將玻璃板放於一疊紙巾上，倒少量矽化液於其表面上，用Kimwipes紙巾塗抹均勻，然後用去離子水沖洗、紙巾擦乾。
4.安裝玻璃與間隔片：
a.將較大的（不帶凹口）玻璃板平放在實驗台上，在玻璃板的兩側將間隔片平行置於其邊緣放妥。
b.用凡士林輕塗以助於間隔片在後面的操作中保持原位。
c.將內板（帶凹口的玻璃板）在間隔片上放妥。
d.用夾子或鐵皮製紙夾將玻璃板加在一起，將整塊玻璃的兩邊及底部用凝膠密封帶封緊，形成不透水密封。
5.根據玻璃板的大小和間隔片的厚度計算所需凝膠的體積。
6.（可做可不做）將所需用量的聚丙烯醯胺：亞甲雙丙烯醯溶液放於一乾淨的帶側臂的燒瓶中，加入磁力攪拌子，抽真空脫氣。開始脫氣應溫和一些，並邊脫氣邊旋轉燒瓶直至不再有氣泡溢出為止。
灌制凝膠
7.下面的操作需要戴手套，在托盤上進行，以免濺出的丙烯醯胺：亞甲雙丙烯醯溶液灑在實驗台上。動作應迅速，於丙烯醯胺聚合前完成。
a.每100ml丙烯醯胺：亞甲雙丙烯醯溶液中加入35μlTEMED，輕輕旋轉混勻溶液。
b.用50ml注射器吸取凝膠溶液，調轉注射器，排淨進入針管的空氣。將注射器的針頭插入兩塊玻璃板之間的空隙，注入丙烯醯胺溶液，幾乎注滿改空隙。
c.將玻璃板斜靠在試管架上，與實驗台面成約10°角。
8.立即將合適的梳子插到凝膠中，小心勿使梳齒下留有泡。梳子的頂端應略高於玻璃板的上沿。用鐵皮製紙夾將梳子夾緊，使其就位。必要時，用剩餘的丙烯醯胺溶液完全充滿模具。確認無丙烯醯胺溶液從模具漏出。
9.丙烯醯胺於室溫聚合30~60min。若凝膠回縮明顯，應補加丙烯醯胺：亞甲雙丙烯醯溶液。
10.聚合完全後，用1×tbe浸潤的紙巾包繞梳子和凝膠的頂部。然後用SaranWrap模密封整塊凝膠，4℃保存，直至使用。
11.當準備好進行電泳時，在梳子的周圍及其頂部噴些1×TBE緩衝液，從聚合的凝膠中小心取出梳子。用注射器吸取1×TBE沖洗加樣孔。用剃鬚刀或解剖刀除去凝膠底部的密封膠帶。
上樣與電泳
12.將凝膠放入電泳槽中，用大號鐵皮製夾子夾住其邊緣或用裝置本身的夾子固定。帶凹口的玻璃板應面對緩衝液槽向裡面放置。
13.用配製凝膠溶液同一批次的5×TBE配製電泳緩衝液灌滿緩衝液槽。用一根彎頭巴斯德吸管或注射針頭排除藏匿於凝膠底部的氣泡。
14.用巴斯德吸管或注射器再次吸取1×TBE沖洗加樣孔。將DNA樣品與適量6×凝膠載樣緩衝液混合，用Hamilton注射器或帶有拉長的塑膠吸頭的微量移液管加入加樣孔。
15.將電極與電源相連（正極接下槽），打開電源，進行電泳。
16.電泳至標準參照染料遷移至所需位置。關閉電源，拔掉插頭，棄去電泳槽中的電泳緩衝液。
17.卸下玻璃板，用解剖刀或剃鬚刀片除去凝膠密封膠帶。將玻璃板放在實驗台上（矽化的玻璃板在上面）。用間隔片或塑膠楔將上面的玻璃板的一角翹起。檢查一下凝膠仍應附著在下面玻璃板上。將上面的玻璃板平穩的移開，去掉間隔片。
18.用染色檢測或放射自顯影檢測檢測聚丙烯醯胺凝膠中的DNA條帶的位置。
