絨毛膜尿囊移植，把從正常環境分離的胚胎或其它組織移植到雞胚的尿囊絨毛膜（CAM）上，使其在尿囊絨毛膜上繼續生長和分化，是分析發育的一種研究方法。如MaryRawles（1952）把早期胚胎的囊胚層仔細地分成一定部分，放在CAM上生長，再把移植體製成切片，檢查它們的組織來確定移植體中的組織類型，根據實驗結果就能把囊胚層各部分發育的潛能編成表。Weiss和Taylor（1960）套用CAM移植法去解答胚胎單個細胞的行為和相互作用。從較大的雞胚（孵育8-14天）器官中分離出細胞，離心細胞懸液使其聚集成團，然後再移植到CAM上。在CAM上進一步發育以後，把聚集的組織製成切片，發現它們又構成原來器官的組織特點。
簡介
例如，中腎聚集體發育成正常的腎小管，皮膚聚集體產生羽毛。因此證明了已進入分化階段的器官所分離的細胞仍然具有一種潛能，能再聚集並再構成正常的組織。發育生物學上還有許多研究涉及到CAM移植，甚至已證實從蛙到人的各種組織都能在雞的CAM上生長。但是這種技術與體外培養方法相比有些不同，體外培養必須在嚴格控制的條件下進行，而在CAM移植上，對研究的組織所提供的環境是不能精確確定的，隨著胚胎（宿主）發育，胚胎循環中的一些物質如激素會進入CAM上而影響移植體的發育。然而CAM移植技術比體外組織培養技術要容易的多，不需要那么複雜的準備工作。這個胚外位置對研究的組織進一步發育提供了非常有利的環境，胚外液體是合適的“培養基”。如果移植塊在CAM上成功生長的話，CAM上的血管將會長入移植體，為它提供氧氣和營養物，同時帶走代謝廢物。
本實驗介紹CAM移植技術，並進行早期胚胎組織的移植實驗。
實驗技術
一、宿主的準備
1.取孵育9-10天的雞蛋作為宿主。先逐個照蛋，以確定尿囊絨毛膜上血管呈“Y”形的部位。並在蛋殼上作標記。血管交叉點被認為是移植的最好位置。
2.在蛋的鈍端氣室處的蛋殼上用解剖針刺一個孔，這樣，在切開蛋殼時，尿囊絨毛膜會下降一些，膜的下降有助於防止在後面的操作中受到損傷。用酒精消毒雞蛋的鈍端，把探針插入約0.5cm深。做這一步時，必須小心控制探針，因為要用點力氣才能刺穿蛋殼，而這樣又很容易穿過氣室伸入胚胎。
3.在蛋殼上原已做了標記的地方，用單面刀片切割一個四方形的“視窗”，用透明膠帶封住它和鈍端小孔，將雞蛋暫放回孵育箱。
二、供體準備（圖12.1）
1.供體組織可以從不同胚齡的雞胚中取得。用早期胚胎（孵育36-48小時）的組織效果會更好，這是因為在發育過程中形態變化會更顯著。用孵育72小時或更大胚齡的雞胚組織，則容易切割供體和移植供體。但是無論是胚齡小或胚齡大的，移植眼睛、或孵育72-84小時雞胚的肢芽、或孵育5-6天胚胎的背部組織均會得到較好的效果。
2.供體胚胎在盛有HowardRinger溶液的培養皿中切割。先將胚胎與其下方的卵黃囊分離開，然後在供體上用二支解剖針，交叉解剖針，使針尖頂著盤底，象剪子樣彼此以相反的方向拉針，將供體組織切開。一個供體能作幾個移植體。
3.留下幾個與供體同齡的雞蛋，不作任何手術，在孵育箱中繼續發育，以便與相應的移植組織塊作對照。
三、移植組織塊
重新打開宿主雞蛋，集中光源於雞蛋“視窗”以便能看清尿囊絨毛膜上的“Y”字形區域。用鐘錶鑷子移植供體組織塊。把它放在血管交叉點上。也可以用細口吸管移植組織，但是吸管帶來的鹽溶液會造成組織漂浮而離開選擇的位置。如果移植塊滑出視線到視窗邊緣，或者找不到了，應該移植第二塊組織到此位置上。移植好以後儘可能快地重新封好蛋殼，防止雞蛋溫度下降太大和水份蒸發，把它放回孵育箱中。
四、觀察實驗結果
1.繼續孵育7天后，去掉透明膠帶，一片片地剝去蛋殼使“視窗”擴大，仔細觀察尿囊絨毛膜上移植體生長的情況。如果移植成功的話，在膜上很容易看到一塊較大的組織塊，假如沒有移植好，通常只能看到一塊小小的紅棕色或黑色斑點。
2.把成功的移植塊從尿囊絨毛膜上切下來，保存在10%的福爾瑪林中。
3.在解剖鏡下仔細檢查移植塊，繪畫每個草圖，測量大小，辨認分化的結構，並與孵育箱中未動手術的供體胚胎的相應組織進行對照，比較它們的發育程度和“正常性”。
實驗材料
1.實驗材料：
受精雞蛋
2.實驗儀器：
孵蛋箱、照蛋箱、單面刀片、解剖針、鐘錶鑷子、眼科剪、酒精燈、培養皿、解剖鏡、透明膠帶。
3.實驗藥品：
HowardRinger溶液，用前溫熱到孵育溫度。
70%酒精
脫脂棉花
