原理
利用酶標記抗原(抗體)和待測抗體(抗原)在電場中向一定方向移動,在比例適當的地方形成沉澱線,通過酶作用底物而顯色,指示沉澱線的存在。該法的敏感性大大高於對流免疫電泳。
本試驗以檢測血吸蟲抗體為例。
材料試劑
1.0.02Mol/pH8.6巴比妥緩衝液
巴比妥0.553g
巴比妥鈉3.503g
乳酸鈣0.512g
H2O加至1000ml
2.0.1Mol/LpH7.0PBS(0.14Mol/LNacl)
3.0.2Mol/LpH7.6硼酸緩衝液
硼酸10.510g
硼砂2.860g
H2O加至1000ml
操作方法
1.酶標抗原的製備用1ml血吸蟲卵抗原(蛋白含量為1.5mg/ml~2.0mg/ml)加入3mg~4mg辣根過氧化物酶(蛋白質:酶=1︰2),液體呈棕紅色,然後在輕輕攪拌下,緩慢加入50μl1%戊二醛,要求在5min~10min內滴加完畢。置20℃~25℃攪拌2h。裝入透析袋,於1000ml、0.1Mol/LpH7.0PBS液4℃透析2天,並換液3次~4次。取出酶標記物加等量純甘油,使含50%甘油試劑,即為酶標抗原。分裝小瓶,存於-20℃中備用。2.瓊脂凝膠板的製備取優質瓊脂,以0.02Mol/LpH8.6巴比妥緩衝液製成1%瓊脂,溶化後,置於玻片上,製成2mm厚的凝膠板。
3.打孔加樣打6對孔,抗原孔徑為0.30cm,抗體孔為長方形0.2cmױ.1cm。抗原、抗體各加5μl及50μl。抗原用上述酶標抗原做1︰20至1︰30稀釋。
4.電泳抗原孔置於負極,電壓4V/cm~5V/cm,電泳時間45min~60min,電泳後,於蒸餾水中盪洗1min~2min即可,用濾紙吸去水分,並用毛細吸管吸盡長孔及圓孔中的水液後,即可用底物的溶液顯色。
5.配製底物溶液,現用現配。將飽和聯苯胺溶液,加等量pH7.6硼酸緩衝液,然後將上液9份和0.1%過氧化氫1份相混,即為所需的底物溶液。
6.免疫酶染色將瓊脂凝膠板置於培養皿中,緩緩傾入底物溶液,直至浸沒凝膠板為止,置於室溫或37℃,經1h~2h用目測可觀察反應結果。
結果判定
1.陽性反應:在抗原抗體孔之間呈現明顯的棕紅色的線條。
2.陰性反應:不出現棕紅色線條者。