英文名 Pear decline Phytoplasma
分類地位 原核生物門，軟球菌綱，植原體屬，
分布
歐洲：廣泛分布於德國、義大利。在奧地利、前捷克和斯洛伐克、法國、西班牙、瑞士、前蘇聯和前南斯拉夫局部分布。比利時、英國和希臘可能發生。北美洲：美國於1946年在太平洋沿岸的幾個州首先發現梨衰退病，現在病害存在於東北部的部分州，有可能遍及加利福尼亞的商品性果園。
危害情況
有兩種衰退病症狀類型，即快速衰退和慢性衰退或者葉片捲縮。快速衰退：
植株發病時，葉芽著生處的韌皮部嚴重損害，在生長期，根得不到營養，果實停止生長，果實和葉片快速萎蔫，也伴隨著一些葉片的枯焦和枯死，植株一般幾周內死亡。
慢性衰退：
植株發病時，病原的侵染性減弱，病害發展較慢，病害嚴重度變化較大。植株頂端生長減弱或停止生長，葉片小而少，呈淡綠色的皮革狀，具略向上捲曲的邊緣；到秋天葉片變成紅色，提早脫落。
感病梨樹在植原體的侵然早期開花較多，但到後期植株開花較少，結果率降低，果形變小。剝開接穗連線處的樹皮，在樹皮表面和形成層表面可以看到褐色的線，有的直接出現在連線處下方，在樹皮上還可以看到縱向的凹陷。
在感病砧木如Pyrus serotina, Pyrus ussuriensis 和 Pyrus communis的一些幼苗上，病原植原體在春季含量高，並誘導胼邸質的積累和（或）毒素的產生。將樹皮剝起來，可能會觀察到燒焦樣的黑色斑點，特別是在嫁接處。韌皮部的部分壞死擴展到植株最敏感的部分。
形態特徵
梨衰退病植原體主要呈絲狀，通常具有3層膜的分枝體，但缺少堅硬的細胞壁。病原植原體在體外至今還未培養成功。在生長季節，衰退植原體在篩管中增殖很快，一些梨樹可能在幾個月之內死亡，但大多數可存活數年，但根據不同的氣候條件，生長緩慢，結果減少，對於極端環境條件，病樹失去抵抗力。生物學
寄主:病原植原體的主要寄主是梨屬Pyrus spp植物。採用沙梨P. pyrifolia和秋子梨P. ussuriensis作砧木的梨樹發病時，容易出現快速衰退，尤其是採用下列品種作接穗是更為明顯：Williams, Beurre Hardy, Max Barlett。但品種Mentecosa Precoz Morettini較少被感染。而對病品種作砧木時，發病時容易出現葉片捲縮（慢性衰退），如西洋梨P. commuuis，杜梨P. betulifola和豆梨P. alleryana。病害也能在榲柏屬植物上發生，偶爾在這些樹種作砧木的嫁接樹上發生。梨衰退病可以通過昆蟲介體傳染到草本寄主植物長春花Catharanthus roseus上。
傳播途徑
病原植原體的自然傳播介體主要是通過昆蟲介體－梨木虱（Cacopsylla pyricola）傳播。大約在1832年，梨木虱從歐洲傳入美國，導致美國梨樹大面積發生衰退病。梨木虱在海拔較高的地區較普遍。在瑞士，海拔600－1000m的地方也存在這種介體，其從梨樹遷移，而且以成蟲期在樹皮裂縫中越冬。介體幾小時就能獲得植原體，但是要成為持久性傳毒介體需要3周時間。昆蟲介體一般是短距離傳播，如植株間傳播、果園間傳播或從野生感病寄主上傳播病原植原體。在國際貿易中，病原隨著帶病的梨樹植株、砧木和接穗傳播，也可能由昆蟲介體傳播。此外，病害可以通過嫁接傳染，但成功率較低，只有33%，實驗條件下用昆蟲介體接種傳染，在介體取食後2個月，植株便出現症狀，接穗種類和樹齡似乎不影響梨衰退病的發生。檢疫與防治
1． DAPI染色：將冰凍的莖或根的切片，用粘合DNA螢光染料DAPI染色，然後在螢光顯微鏡下觀察，即可看到在篩管中有一些明亮的螢光小顆粒（單個或幾個）。從根部切片中常常可以看到最好的結果，因為根部的植原體數量受季節的影響較小。
2． 傳染試驗：用嫁接法將根或莖部接穗嫁接到適當的植物上，如西洋梨新品種P. communis cv. precocious。在栽培品種Percocius上，初期葉片輕微褪色，出現變寬和隆起的葉脈，並沿著葉脈症狀的出現，葉片變厚成皮革狀，變脆。
3． 典型症狀的顯微鏡觀察：在病株嫁接處樹皮的橫切片在韌皮部結構中很多篩管壞死，在生長期，這個現象更為明顯，在嫁接連線處，衰老前篩板變硬是病害診斷的典型症狀。澱粉試驗表明在嫁接連線處有澱粉積累，而在根部澱粉很少甚至沒有。這種方法簡單易行，但在耐病品種中的病原植原體不產生這種症狀。
4． 分子生物學方法：
已有多位學者發展了用於檢測梨衰退植原體的直接PCR和槽式PCR方法，直接PCR所用的引物為：P1 (Deng et Hiruki, 1991) 5′-AAG AAT TTG ATC CTG GCT CAG GAT T-3′
主要參考文獻
1. Agrios G.N.1997 Plant pathology(fourth edition). Academic Press(New York)
2. Ahrens, U., Lorenz, K.-H., and Seemuller, E. (l993). Genetic diversity among mycopIasmalike organisms associated with stone fruit diseases. Mol. PlanANicrobe interact. 6, 686--69l.
3. Carraro L., Osler R., Loi N., Ermacora P., & Refatti E. (1998). Transmission of the European stone fruit yellows phytoplasma by Cacopsylla pruni. J. of Plant Pathol. 80, 233-239.
4. ChenY.D. & Chen T.A. (1998). Expression of engineered antibodies in plants : a possible tool for spiroplasma and phytoplasma disease control. Phytopathology 88, 1367-1371.
