雙縮脲法

雙縮脲法

雙縮脲法是一個用於鑑定蛋白質的分析方法。雙縮脲試劑是一個鹼性的含銅試液,呈藍色,由1%氫氧化鉀、幾滴1%硫酸銅和酒石酸鉀鈉配製。當底物中含有肽鍵時(多肽),試液中的銅與多肽配位,配合物呈紫色。可通過比色法分析濃度,在紫外可見光譜中的波長為540nm。鑑定反應的靈敏度為5-160mg/ml。鑑定反應蛋白質單位1-10mg。

名詞解釋

雙縮脲反應產生的紫色絡合物顏色的深淺與蛋白質濃度成正比,而與蛋白質分子量及胺基酸成分無關,故可用來測定蛋白質含量。

雙縮脲試劑中真正起作用的是硫酸銅,而氫氧化鉀僅僅是為了提供鹼性環境,因此它可被其他鹼,如氫氧化鈉所代替。向試劑中加入碘化鉀,可延長試劑的使用壽命。

雙縮脲法

(一)實驗原理

雙縮脲(NH2CONHCONH2)是兩個分子脲經180℃左右加熱,放出一個分子氨後得到的產物。在強鹼性溶液中,雙縮脲與二價銅離子形成紫色絡合物,稱為雙縮脲反應。凡具有兩個醯胺基或兩個直接連線的肽鍵,或能夠以一個中間碳原子相連的肽鍵,這類化合物都有雙縮脲反應。

紫色絡合物顏色的深淺與蛋白質濃度成正比,而與蛋白質分子量及胺基酸成分無關,故可用來測定蛋白質含量。干擾這一測定的物質主要有:硫酸銨、Tris緩衝液和某些胺基酸等。

此法的優點是較快速 ,不同的蛋白質產生顏色的深淺相近,以及干擾物質少。主要的缺點是靈敏度差,不適合微量蛋白的測定。

(二)試劑與器材

1. 試劑:

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1. 試劑:

(1)標準蛋白質溶液:用標準的結晶牛血清清蛋白(BSA)或標準酪蛋白,配製成10mg/ml的標準蛋白溶液,可用BSA濃度1mg/ml的A280為0.66來校正其純度。如有需要,標準蛋白質還可預先用微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,計算出其純度,再根據其純度,稱量配製成標準蛋白質溶液。牛血清清蛋白用H2O 或0.9%NaCl配製,酪蛋白用0.05N NaOH配製。

(2)雙縮脲試劑:稱以1.50克硫酸銅(CuSO4·5H2O)和6.0克酒石酸鉀鈉(KNaC4H4O6·4H2O),用500毫升水溶解,在攪拌下加入300毫升10% NaOH溶液,用水稀釋到1升,貯存於塑膠瓶中(或內壁塗以石蠟的瓶中)。此試劑可長期保存。若貯存瓶中有黑色沉澱出現,則需要重新配製。

2. 器材:

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2. 器材:

可見光分光光度計、大試管15支、鏇渦混合器等。

(三)操作方法

標準曲線的測定:取12支試管分兩組,分別加入0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升的標準蛋白質溶液,用水補足到1毫升,然後加入4毫升雙縮脲試劑。充分搖勻後,在室溫(20~25℃)下放置30分鐘,於540nm處進行比色測定。用未加蛋白質溶液的第一支試管作為空白對照液。取兩組測定的平均值,以蛋白質的含量為橫坐標,光吸收值為縱坐標繪製標準曲線。

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標準曲線的測定:取12支試管分兩組,分別加入0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升的標準蛋白質溶液,用水補足到1毫升,然後加入4毫升雙縮脲試劑。充分搖勻後,在室溫(20~25℃)下放置30分鐘,於540nm處進行比色測定。用未加蛋白質溶液的第一支試管作為空白對照液。取兩組測定的平均值,以蛋白質的含量為橫坐標,光吸收值為縱坐標繪製標準曲線。

2、樣品的測定:取2~3個試管,用上述同樣的方法,測定未知樣品的蛋白質濃度。注意樣品濃度不要超過10mg/ml。

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